美國伯樂 GelDoc Go 凝膠成像系統熒光信號弱的問題（例如核酸凝膠中的 EB、SYBR™ Safe，或蛋白凝膠中的熒光標記），可按以下步驟由簡入繁進行排查和解決。

GelDoc Go 使用的是 LED 紫外/藍光（壽命長，但亮度仍可能因老化或設置問題下降），且采用固定光圈鏡頭。信號弱通常與激發光強度、濾光片匹配、曝光參數或樣品本身相關。

一、檢查成像模式與光源設置

1、錯誤的光源模式：GelDoc Go 需要明確選擇對應的激發光源。

（1）核酸凝膠（EB、GelRed、SYBR Safe）→ 應選 UV（302 nm）或 藍光（藍光適用于 SYBR Safe 等染料）。

（2）如果誤用白光（White trans），則無法激發熒光。

（3）在 Image Lab 軟件中選擇正確的 “應用" 模板，或手動設置光源。

2、濾光片位置：GelDoc Go 內部濾光片轉輪需匹配熒光染料。常見配置：

（1）EB / GelRed → 使用 605 nm 帶通濾光片（橙色/紅）。

（2）SYBR Safe → 建議使用 530 nm 綠光濾光片。

（3）檢查軟件中是否選擇了正確的濾光片位置，若濾光片卡住或未到位，信號會極弱。

二、調整曝光與增益參數

1、曝光時間過短：默認自動曝光可能因背景過高而提前終止。

（1）改為 手動曝光，逐步增加時間（1s、5s、10s，甚至更長，如 30-60s）。

（2）觀察實時預覽，直到條帶清晰可見。

2、增益（敏感度）：在 Image Lab 的“采集"設置中，提高 增益 值（通常 1-10 倍），可增強弱信號，但會增加背景噪音。

3、信號平均：開啟“信號平均"（2-4 次）可改善信噪比，但會使成像時間延長。

三、檢查樣品與染色效率

1、熒光染料濃度或染色時間不足：

（1）核酸凝膠：確認染料加入量正確（如 EB 終濃度 0.5 μg/mL），染色時間足夠（20-30 分鐘，或按染料說明書）。

（2）蛋白凝膠：如果是熒光染色（如 SYPRO Ruby），確保固定和染色步驟充分，洗滌時間不要過長。

2、DNA 上樣量過低：嘗試增加 2-3 倍上樣量，或重新電泳加載已知陽性對照。

3、凝膠厚度與緩沖液：過厚的凝膠（>1 cm）會吸收激發光；電泳結束后未用新鮮 buffer 平衡，殘留的 SDS 或 EDTA 可能抑制某些熒光染料。

四、清潔光學元件及樣品臺

1、鏡頭和濾光片窗口：用鏡頭紙或柔軟棉布蘸取無水乙醇輕輕擦拭鏡頭外表面，以及樣品臺內部的保護玻璃。灰塵或污漬會散射光線，降低信號。

2、LED 光源窗口：GelDoc Go 的紫外/藍光 LED 陣列上方有一層保護玻璃，若沾有凝膠碎屑或緩沖液結晶，應小心清潔。

（1）注意：清潔前務必關閉電源，避免紫外傷害。

（2）使用蒸餾水濕潤的無塵布擦拭，再用鏡頭紙擦干。

五、預防建議

1、每次使用前檢查凝膠有無氣泡或裂痕。

2、不要過度洗滌熒光染色的凝膠。

3、定期（每月）用熒光參考片驗證光源一致性。